在科研实验中，对小动物进行采血是一项常见且重要的操作，主要用于获取动物的生理、生化指标数据检测，以支持实验研究和疾病诊断。今天我们总结了科研人在实验中常用到的9种采血方式以及操作注意事项，和大家共同学习。

眼眶后静脉丛采血

取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，折断成2～2.5cm长的毛细管段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用。取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。采血后纱布轻压眼部止血。

心脏采血

主要用于有特定实验要求的采血办法。

小鼠麻醉后，去除动物左侧剑突附近毛发（不去除毛发也可），用酒精棉球或碘伏擦拭剑突左侧部位，取仰卧位，左手固定小鼠，右手持注射器，沿剑突和肋骨交汇点缓慢进针，当感受到注射器针头传来的震动感时，此时针头触及心脏壁，再稍进针，可见注射器内有血液自然泵入，回拉注射器，血液即会持续涌入。采取一定量后，拔出注射器，右手稍揉刺入部位止血。

颈静脉采血

相对于眼眶后静脉丛采血法，该法对动物造成的疼痛感更小，更加符合动物福利，本法适用于大鼠。

左手固定大鼠，去除锁骨附近被毛，酒精棉球擦拭消毒。右手持注射器，沿锁骨处进针（去除毛发后可清晰可见静脉处），刺穿皮肤后轻回拉注射器，使注射器产生负压。大约30度向上进针，当注射器内有血液出现时，说明已经刺入采血位置，回拉注射器抽血，直至完成采血，采血完成后用干棉球稍按压止血即可。

股动脉穿刺采血

本法实际应用较少，但在特定实验中却是一种非常优异的采血方式，同样也是一种常用的动脉给药方式。

首先麻醉动物，去除动物腹股沟处被毛，沿腹股沟中线处开一小口，钝性分离皮下组织。右手持注射器，使注射器针尖斜面朝上，缓缓刺入股动脉，轻轻回抽注射器，血液自然泵入注射器内。用棉球按压刺入处，退出注射器即可。

采血结束后，应持续按压刺入点1-3min，有特殊实验要求时也可采用埋置留置针法持续采血。

摘眼球采血

单手保定好小鼠，取侧卧位，必要时剪掉小鼠胡须，防止污染血液。轻压侧眼部皮肤，使眼球充血突出，用弯头镊夹取眼球并快速摘取，将鼠倒立，同时用左手中指适度用力按小鼠心脏部位，以加快心脏泵血速度。当血液流尽时，用脱臼法处死小鼠。过程中一定要固定小鼠，若未固定好小鼠，头部摇动会损失很多血液。

腹主动脉采血

本法主要用于大鼠大量采血。首先麻醉动物，将动物置于解剖台，手术刀沿腹中线开一口，将肠组织置于体外，即可见腹主动脉。右手持注射器，使针尖斜面朝下刺入腹主动脉，回拉注射器完成采血即可。

剪尾采血

当所需血量很少的时候采用本法。温水浸泡，消毒小鼠尾部，用锐器割去尾尖0.3-0.5cm，也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉收集血液，过程中可以捋尾巴加速血液收集。血液可以用于涂片、试纸检测血糖等。

后肢隐静脉采血

后肢隐静脉采血常用于大小鼠的少量血液采集，无需麻醉，待动物固定后，保持后腿可自由活动，为使膝盖与踝关节之间的隐静脉更加明显，可以在后腿膝盖以上使用止血带。剃除注射区域的毛发，在近尾侧的皮肤表面可以找到隐静脉。采血针垂直于皮肤表面扎破血管，不要进针过深，以免刺穿肌肉或碰到骨头，血液会从入针处慢慢流出，此时可用毛细采血管收集，并松开止血带。

采血结束后，按压伤口或使用止血剂（如硝酸银）以止血，并将小鼠放回笼内。

下颌静脉采血

可将小鼠侧卧以保定小鼠，并使小鼠头部尽量固定。在小鼠嘴角沿线与外眼角线相交处，会发现一个无毛的小点，有点像酒窝，就是颌下静脉的大致位置。采血针保持垂直于皮肤表面，刺入皮肤，深度不超过针头的斜面，拔出针头后，血液就会流出。

为方便采血，可使小鼠头部低于心脏高度。可以直接使血液滴入采集管，也可以使用毛细采血管。采血结束后，按压以止血。

动物采血牵涉到动物福利与伦理问题，对采血人员的技术操作要求很高，更要做好采血后对动物的护理，尽量减少对动物的伤害。

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